page mise à jour le 20 janvier 2012

Réservation CEFI

Plateforme d'Imagerie du petit animal - Centre d'Explorations Fonctionnelles - Imagerie (CEFI)

 


Echographie cardiaque :
ventricule Gauche

Echographie cardiaque :
Doppler tissulaire

Echographie cardiaque : déformation du ventricule Gauche
IRM cardiaque


   


Conventions d'utilisation


imagerie in vivo

Echocardiographie Doppler
contact : brigitte.escoubet@inserm.fr

L'échographie Doppler permet d'évaluer les paramètres morphologiques et fonctionnels du cœur et des vaisseaux sur le petit animal de laboratoire par un examen non-invasif.


L’exploration échographique peut être réalisée sur différentes espèces (souris, rat, lapin…). L’animal anesthésié et maintenu en température. L’examen dure de 15 à 30 minutes suivant le protocole.

Échographie






     

Imagerie nucléaire
contact : laure.sarda@inserm.fr

L’imagerie scintigraphique, chez le petit animal, utilisant une gamme de traceurs radiomarqués (technétium-99m, à l’indium-111, l’iode-123, au gallium-67, fluor-18) (SPECT, TEP) permet l’imagerie fonctionnelle et moléculaire dans de nombreux domaines de la physiopathologie (cardiaque, pulmonaire, rénale, osseuse, thyroïdienne, de l’infection, de l’inflammation, de la mort cellulaire et de la fibrose).

Equipements à disposition : Gamma-caméra : gImager Biospace Lab, Nano SPECT/CT plus Bioscan et
Micro PET Mosaïc Philips

Animaux explorables (souris, rats, lapins).

 


Marquages isotopiques, mesures de biodistribution et de cinétiques plasmatiques.




Comptage de radioactivité sur lame par Bêta Imageur.

 

  • TEMP :

 

  • TEP :





  • Marquages de biodistribution et cinétique




  • Bêta Imager

 
     

Imagerie par résonance magnétique (IRM)
contact : jean-michel.serfaty@bch.aphp.fr

L'IRM 7T permet l'imagerie chez le petit animal, (souris et rats).

 


IRM 7T

   
cardiovasculaires et métabolisme in vivo

L'électrocardiogramme (ECG) est un enregistrement de l'activité électrique du cœur, par des électrodes reliées à un électrocardiographe qui amplifie le signal électrique du cœur.

Deux types d’enregistrements peuvent être réalisés au CEFI :

ECG de surface

L'activité électrique cardiaque est détectée par des électrodes piquées en sous-cutané, visualisée et enregistrée. L'analyse de l'ECG de surface permet de mesurer les anomalies de la conduction, dépolarisation et repolarisation, ainsi que les troubles du rythme cardiaque.

L’animal est anesthésié et maintenu en température. L’enregistrement est de courte durée.






Enregistrement d’ECG de surface






Télémétrie ECG (technique non disponible actuellement)

La technologie télémétrique permet de mesurer un signal physiologique sur des animaux éveillés et libres dans leurs cages, équipés d’un capteur (récepteur/émetteur). Les émetteurs/récepteurs dont le CEFI dispose permettent de suivre en continu le signal ECG, la température corporelle ainsi qu’une évaluation de l’activité de l’animal. Les méthodes télémétriques permettent de recueillir les signaux physiologiques sans perturber l’animal, et ce sur une durée de quelques minutes à quelques mois.

Après implantation des capteurs chez l’animal anesthésié, une phase de surveillance et de récupération d’au moins une semaine est respectée avant de procéder à l’acquisition/enregistrement des signaux



Télémétrie ECG




     


Analyse des enregistrements

La lecture quantitative des enregistrements ECG est réalisable au CEFI sur postes informatiques indépendants des stations d’enregistrement. Elle permet d’analyser l’ensemble des paramètres de l’activité électrique cardiaque, en particulier les intervalles ECG, le rythme et la conduction.

 

 

Analyse ECG

     

Hémodynamique par cathétérisme artériel et cardiaque - modèles chirurgicaux
contact : clement.journe@inserm.fr

(techniques chirurgicales disponibles actuellement)

Réalisation de modèles chirurgicaux : sténose aortique, infractus du myocarde.

Le cathétérisme cardiaque par une sonde pression/volume permet d’évaluer la fonction pompe du coeur. La reconstruction de boucles correspondant à l’évolution de la pression en fonction du volume est une illustration de la mécanique cardiaque au cours du cycle. La dérivation de divers paramètres à partir des signaux in vivo de pression et de volume permettent ensuite d’évaluer de manière précise les propriétés mécaniques du cœur (contractilité, relaxation…).

Chez l’animal (rat, souris) anesthésié, un cathéter de conductance miniaturisé et équipé d’une sonde de pression est introduit dans un vaisseau (carotide ou jugulaire) puis est conduit jusque dans la cavité cardiaque (gauche ou droite). Le cathéter est relié à une station d’acquisition permettant un enregistrement en temps réel des signaux de pression et de volume sur cœur battant.

Le dispositif utilisé pour le cathétérisme cardiaque permet également la mesure directe de la pression artérielle systémique au niveau de l’aorte ascendante, chez l’animal anesthésié

 

Hémodynamique et chirurgie

     

Mesure non-invasive de la pression artérielle
contact : clement.journe@inserm.fr


La mesure plethysmographique de la pression artérielle chez la souris ou le rat éveillé par tail-cuff method consiste à déterminer la contre-pression minimum capable d’arrêter le flux sanguin artériel par gonflage d’un manchon autour de la queue. Cette méthode non-invasive permet d’examiner des animaux dont le système cardio-vasculaire n’est pas déprimé par un anesthésiant. Non traumatisante, elle peut être répétée autant de fois que nécessaire au cours de la vie de l’animal.

Le dispositif disponible au CEFI est de type « piezoplethysmographique ». Le signal de pouls, la pression de gonflage du manchon et la fréquence cardiaque sont enregistrés en continu



Pression artérielle



     

Études en cages à métabolisme
contact : clement.journe@inserm.fr


Les cages individuelles à métabolisme, spécifiquement adaptées au souris sont construites de manière à permettre le contrôle des prises alimentaires (nourriture et boisson) et le recueil séparé des matières excrétées (urine, fécès). Les contrôles métaboliques permettent d’étudier diverses fonctions : comportement alimentaire, fonction rénale, fonction digestive…

Les animaux sont placés dans les cages pour des périodes de 24 heures dans un local climatisé et équipé d’un cycle d’éclairage jour-nuit.

Les bilans métaboliques sont réalisables sur place au laboratoire de biochimie de l’ICB (plate-forme IbiSA)

Equipement



Cages à métabolisme